| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第13-29页 |
| 1.1 研究背景 | 第13页 |
| 1.2 木质纤维素概述 | 第13-21页 |
| 1.2.1 木质纤维素结构特点 | 第13-16页 |
| 1.2.2 木质纤维素对环境的影响 | 第16-17页 |
| 1.2.3 木质纤维素制备生物乙醇研究现状 | 第17-21页 |
| 1.3 纤维素溶剂在木质纤维素预处理中的应用 | 第21-24页 |
| 1.3.1 胺氧化物体系 | 第21-22页 |
| 1.3.2 离子液体溶解体系 | 第22-23页 |
| 1.3.3 碱/尿素或硫脲体系 | 第23页 |
| 1.3.4 浓磷酸体系 | 第23-24页 |
| 1.4 木质纤维素的酶解糖化影响因素 | 第24-26页 |
| 1.4.1 纤维素酶的影响 | 第24-25页 |
| 1.4.2 木质纤维素的影响 | 第25-26页 |
| 1.5 本课题研究目的及思路 | 第26-29页 |
| 1.5.1 研究目的 | 第26-27页 |
| 1.5.2 研究思路 | 第27-28页 |
| 1.5.3 研究路线 | 第28-29页 |
| 第二章 不同纤维素溶剂预处理对玉米秸秆化学成分及酶解性能的影响 | 第29-45页 |
| 2.1 引言 | 第29页 |
| 2.2 实验材料与仪器 | 第29-31页 |
| 2.2.1 实验原料 | 第29-30页 |
| 2.2.2 实验试剂 | 第30页 |
| 2.2.3 实验仪器 | 第30-31页 |
| 2.3 实验方法 | 第31-35页 |
| 2.3.1 低温NaOH/尿素预处理 | 第31-32页 |
| 2.3.2 浓磷酸预处理 | 第32页 |
| 2.3.3 光学显微镜（OM）和激光共聚焦显微镜（CLSM）分析 | 第32页 |
| 2.3.4 玉米秸秆化学成分分析 | 第32-33页 |
| 2.3.5 X射线衍射（XRD）分析 | 第33页 |
| 2.3.6 傅里叶变换红外光谱（FT-IR）分析 | 第33页 |
| 2.3.7 玉米秸秆酶解糖化 | 第33-34页 |
| 2.3.8 玉米秸秆中木质素的分离 | 第34页 |
| 2.3.9 玉米秸秆中木质素的表征 | 第34-35页 |
| 2.4 实验结果与讨论 | 第35-44页 |
| 2.4.1 光学显微镜（OM）和激光共聚焦显微镜（CLSM）分析 | 第35-36页 |
| 2.4.2 玉米秸秆化学成分分析 | 第36-37页 |
| 2.4.3 X射线衍射（XRD）分析 | 第37-38页 |
| 2.4.4 傅里叶变换红外光谱（FT-IR）分析 | 第38-39页 |
| 2.4.5 玉米秸秆酶解糖化分析 | 第39-41页 |
| 2.4.6 木质素傅里叶变换红外光谱（FT-IR）分析 | 第41-42页 |
| 2.4.7 木质素紫外-可见吸收光谱分析 | 第42-43页 |
| 2.4.8 木质素热重分析 | 第43-44页 |
| 2.5 本章小结 | 第44-45页 |
| 第三章 低温NaOH/尿素预处理对麦秆化学成分及酶解性能的影响 | 第45-56页 |
| 3.1 引言 | 第45页 |
| 3.2 实验材料与仪器 | 第45-46页 |
| 3.2.1 实验原料 | 第45页 |
| 3.2.2 实验试剂 | 第45页 |
| 3.2.3 实验仪器 | 第45-46页 |
| 3.3 实验方法 | 第46-47页 |
| 3.3.1 低温NaOH/尿素预处理 | 第46页 |
| 3.3.2 光学显微镜（OM）和激光共聚焦显微镜（CLSM）分析 | 第46页 |
| 3.3.3 麦秆化学成分分析 | 第46页 |
| 3.3.4 X射线衍射（XRD）分析 | 第46-47页 |
| 3.3.5 傅里叶变换红外光谱（FT-IR）分析 | 第47页 |
| 3.3.6 麦秆酶解糖化 | 第47页 |
| 3.4 实验结果与讨论 | 第47-54页 |
| 3.4.1 光学显微镜（OM）和激光共聚焦显微镜（CLSM）分析 | 第47-49页 |
| 3.4.2 麦秆化学成分分析 | 第49-50页 |
| 3.4.3 X射线衍射（XRD）分析 | 第50-51页 |
| 3.4.4 傅里叶变换红外光谱（FT-IR）分析 | 第51-53页 |
| 3.4.5 麦秆酶解糖化分析 | 第53-54页 |
| 3.5 本章小结 | 第54-56页 |
| 第四章 低温NaOH/尿素预处理与酶解糖化“一锅法”制备可发酵糖的研究 | 第56-68页 |
| 4.1 引言 | 第56页 |
| 4.2 实验材料与仪器 | 第56-58页 |
| 4.2.1 实验原料 | 第56-57页 |
| 4.2.2 实验试剂 | 第57页 |
| 4.2.3 实验仪器 | 第57-58页 |
| 4.3 实验方法 | 第58-59页 |
| 4.3.1 预处理与酶解糖化“一锅法” | 第58页 |
| 4.3.2 预处理与酶解糖化“分步法” | 第58页 |
| 4.3.3 低温NaOH/尿素预处理液中糠醛与 5-羟甲基糠醛分析 | 第58-59页 |
| 4.4 实验结果与讨论 | 第59-67页 |
| 4.4.1“一锅法”中不同的底物浓度对酶解糖化效果的影响 | 第59-60页 |
| 4.4.2“一锅法”中不同的酶加载量对酶解糖化效果的影响 | 第60-61页 |
| 4.4.3“一锅法”中不同的表面活性剂浓度对酶解糖化效果的影响 | 第61-63页 |
| 4.4.4 预处理与酶解糖化“分步法”和“一锅法”的对比 | 第63-65页 |
| 4.4.5 低温NaOH/尿素预处理液中糠醛与 5-羟甲基糠醛分析 | 第65-67页 |
| 4.5 本章小结 | 第67-68页 |
| 第五章 结论与展望 | 第68-70页 |
| 5.1 结论 | 第68-69页 |
| 5.2 本论文创新点 | 第69页 |
| 5.3 展望 | 第69-70页 |
| 参考文献 | 第70-81页 |
| 致谢 | 第81-82页 |
| 硕士期间发表的学术论文及其他科研成果 | 第82页 |
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