| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 英文缩写表 | 第7-8页 |
| 主要化学试剂 | 第8-11页 |
| 1 引言 | 第11-13页 |
| 2 试验材料与方法 | 第13-18页 |
| 2.1 试验材料 | 第13页 |
| 2.1.1 大豆品种 | 第13页 |
| 2.1.2 病毒毒源 | 第13页 |
| 2.2 试验方法 | 第13-17页 |
| 2.2.1 接种和取样 | 第13页 |
| 2.2.2 药物配置及浓度确定 | 第13-14页 |
| 2.2.3 叶片注射 | 第14页 |
| 2.2.4 胼胝质的苯胺蓝荧光标记 | 第14页 |
| 2.2.5 NO 的荧光分子标记 | 第14页 |
| 2.2.6 NR 和 NOS 活性测定 | 第14-15页 |
| 2.2.7 SMV 的 CP 引物设计 | 第15页 |
| 2.2.8 叶片总 RNA 提取 | 第15-16页 |
| 2.2.9 RT-PCR 检测 | 第16-17页 |
| 2.3 图像的观察与处理 | 第17-18页 |
| 3 结果与分析 | 第18-30页 |
| 3.1 大豆叶片注射 SNP 后的 NO 荧光观察 | 第18页 |
| 3.2 大豆与 SMV 互作过程中 NO 的变化特征 | 第18-19页 |
| 3.3 大豆与 SMV 互作过程中 NR 和 NOS 活性的变化特征 | 第19-23页 |
| 3.4 注射药物对大豆与 SMV 互作过程中 NO 和胼胝质的影响 | 第23-27页 |
| 3.4.1 预注射 c-PTIO 再接种病毒对 NO 和胼胝质形成的影响 | 第23页 |
| 3.4.2 预注射 L-NAME 或 Na2WO4 再接种病毒对 NO 和胼胝质形成的影响 | 第23-27页 |
| 3.5 分别预注射 c-PTIO， Na2WO4 和 L-NAME 后再接种病毒对未接种上位叶进行病毒 CP 检测 | 第27-30页 |
| 4 讨论 | 第30-34页 |
| 4.1 NO 参与植物对逆境胁迫的应答过程 | 第30-31页 |
| 4.1.1 NO 在植物响应非生物逆境胁迫过程中的作用 | 第30页 |
| 4.1.2 NO 在植物响应生物逆境胁迫过程中的作用 | 第30-31页 |
| 4.2 植物体内 NO 的可能来源 | 第31页 |
| 4.3 胼胝质沉积在胞间连丝上是大豆抵抗 SMV 侵染的关键 | 第31-32页 |
| 4.4 NO 在 SMV 侵染大豆诱发的胼胝质沉积过程中的作用 | 第32-33页 |
| 4.5 下一步研究计划 | 第33-34页 |
| 5 结论 | 第34-35页 |
| 参考文献 | 第35-42页 |
| 在读期间发表的学术论文 | 第42-43页 |
| 作者简历 | 第43-44页 |
| 致谢 | 第44-45页 |
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