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PRRSV WUH3株非编码区诱导IFN-β的能力及其机制研究 |
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| 论文目录 |
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| 摘要 | 第1-8页 | | ABSTRACT | 第8-11页 | | 缩略语表 | 第11-14页 | | 第1章 文献综述 | 第14-29页 | | ·PRRSV的研究进展 | 第14-16页 | | ·PRRSV的分类 | 第14页 | | ·PRRSV的基因多样性 | 第14-15页 | | ·PRRSV的传播 | 第15页 | | ·PRRSV的复制周期 | 第15-16页 | | ·PRRSV的防控 | 第16页 | | ·抗病毒天然免疫概述 | 第16-22页 | | ·Toll样受体(TLR)途径 | 第17-19页 | | ·胞浆受体及其信号通路 | 第19-20页 | | ·IFN信号通路 | 第20-22页 | | ·PRRSV与天然免疫 | 第22-27页 | | ·PRRSV与TLR | 第23-24页 | | ·PRRSV通过IRF介导的RIG-I/MDA5途径靶向IFN增强子 | 第24-25页 | | ·PRRSV与NF-κB信号通路 | 第25-26页 | | ·PRRSV抑制JAK-STAT通路和ISG表达 | 第26-27页 | | ·单股正链RNA病毒基因组UTR简述 | 第27-29页 | | ·UTR与病毒的复制 | 第27页 | | ·UTR与病毒的转录和翻译 | 第27-28页 | | ·UTR的其它功能 | 第28-29页 | | 第2章 研究目的与意义 | 第29-30页 | | 第3章 材料与方法 | 第30-43页 | | ·试验材料 | 第30-33页 | | ·菌株与细胞 | 第30页 | | ·质粒与载体 | 第30-31页 | | ·工具酶及主要试剂 | 第31页 | | ·培养基和抗生素的其配制 | 第31-32页 | | ·主要缓冲液和试剂及其配制 | 第32-33页 | | ·主要实验仪器及设备 | 第33页 | | ·分子生物学分析软件 | 第33页 | | ·实验方法 | 第33-43页 | | ·病毒的增殖与滴度测定 | 第33-34页 | | ·细胞、病毒样品的总RNA的提取和cDNA的合成 | 第34-35页 | | ·目的基因的PCR扩增 | 第35-36页 | | ·PCR产物或酶切产物回收与纯化 | 第36页 | | ·PCR产物和质粒载体的酶切 | 第36-37页 | | ·外源片段与质粒载体的连接 | 第37-38页 | | ·大肠杆菌感受态细胞的制备(氯化钙法) | 第38-39页 | | ·连接产物的转化 | 第39页 | | ·重组质粒的制备与鉴定 | 第39-40页 | | ·乙醇沉淀DNA | 第40页 | | ·体外转录及纯化UTR | 第40-41页 | | ·UTR末端去磷酸化 | 第41页 | | ·UTR的变性及复性处理 | 第41页 | | ·质粒转染(脂质体介导转染法) | 第41页 | | ·双荧光素酶检测实验 | 第41-42页 | | ·SYBR Green Ⅰ实时定量PCR | 第42页 | | ·ELISA检测IFN-β表达量 | 第42-43页 | | 第4章 结果与分析 | 第43-51页 | | ·PRRSV WUH3株UTR体外转录模板的制备 | 第43页 | | ·PRRSV WUH3 UTR在Marc-145细胞中诱导IFN-β | 第43-45页 | | ·5'-ppp增强UTR诱导IFN-β的能力 | 第45页 | | ·UTR的结构增强其对IFN-β的诱导能力 | 第45-46页 | | ·不同UTR缺失突变体诱导IFN-β的能力存在差异 | 第46-47页 | | ·通过SiRNA技术初步探究UTR激活IFN-β的信号通路 | 第47-49页 | | ·UTR诱导IFN-β的生物学意义 | 第49-51页 | | 第5章 讨论与结论 | 第51-54页 | | ·讨论 | 第51-53页 | | ·UTR诱导IFN-β能力的初步研究 | 第51-52页 | | ·UTR结构在其诱导IFN-β中影响的初步研究 | 第52页 | | ·UTR诱导IFN-β信号通路的初步研究 | 第52-53页 | | ·UTR诱导IFN-β生物学意义的简单评价 | 第53页 | | ·结论 | 第53-54页 | | 参考文献 | 第54-63页 | | 致谢 | 第63页 |
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论文编号BS2180742，这篇论文共63页
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