| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 绪论 | 第12-24页 |
| 1.类胡萝卜素的结构、性质及功能 | 第12-16页 |
| 1.1 类胡萝卜素的功能 | 第13-14页 |
| 1.2 岩藻黄素的性质、结构和功能 | 第14-16页 |
| 2.炎症与细胞因子的关系 | 第16-19页 |
| 2.1 炎症与肿瘤生长 | 第17-18页 |
| 2.2 免疫细胞与癌细胞的恶性合作 | 第18页 |
| 2.3 炎症与癌症转移 | 第18-19页 |
| 3.先天免疫系统的介绍 | 第19-22页 |
| 3.1 先天免疫与炎症小体 | 第20-21页 |
| 3.2 先天免疫与核酸识别 | 第21-22页 |
| 4.研究目的及意义 | 第22-24页 |
| 第一章 FX通过抑制NF-?B的磷酸化下调促炎症细胞因子释放 | 第24-46页 |
| 1.1 前言 | 第24-25页 |
| 1.2 实验材料 | 第25-26页 |
| 1.2.1 试剂和耗材 | 第25页 |
| 1.2.2 主要仪器 | 第25-26页 |
| 1.3 材料与方法 | 第26-36页 |
| 1.3.1 Raw264.7 细胞的培养、传代、冻存和复苏 | 第26-28页 |
| 1.3.2 CCK-8 法检测细胞活力 | 第28页 |
| 1.3.3 细胞RNA的提取 | 第28页 |
| 1.3.4 反转录 | 第28-30页 |
| 1.3.5 qPCR法检测基因相对表达量 | 第30-31页 |
| 1.3.6 蛋白的提取 | 第31页 |
| 1.3.7 BCA法测定蛋白浓度 | 第31-32页 |
| 1.3.8 蛋白质印迹 | 第32-33页 |
| 1.3.9 细胞免疫荧光 | 第33页 |
| 1.3.10 酶联免疫吸附反应 | 第33页 |
| 1.3.11 THP1-Lucia/NFκB细胞测定NF-κB活力 | 第33-34页 |
| 1.3.12 主要试剂的配制 | 第34-36页 |
| 1.4 结果分析 | 第36-43页 |
| 1.4.1 CCK法检测FX对 Raw264.7 细胞活力的影响 | 第36-37页 |
| 1.4.2 FX对 LPS诱导的促炎症因子mRNA释放影响 | 第37-39页 |
| 1.4.3 酶联免疫吸附法检测FX对 LPS诱导的促炎症因子蛋白释放影响 | 第39-40页 |
| 1.4.4 免疫印迹法检测FX对 LPS诱导的NF-?B通路蛋白的影响 | 第40-41页 |
| 1.4.5 免疫荧光法检测FX对 LPS诱导的NF-?B入核的影响 | 第41-42页 |
| 1.4.6 THP1-Lucia/NF?B细胞检测FX抑制NF-?B活化效率 | 第42-43页 |
| 1.5 结论 | 第43-46页 |
| 第二章 FX通过下调促炎症细胞因子释放量提高脓毒症小鼠的生存率 | 第46-62页 |
| 2.1 前言 | 第46-47页 |
| 2.2 实验材料 | 第47页 |
| 2.2.1 试剂和耗材 | 第47页 |
| 2.2.2 主要仪器 | 第47页 |
| 2.3 材料与方法 | 第47-51页 |
| 2.3.1 实验动物 | 第47-48页 |
| 2.3.2 组织RNA提取 | 第48页 |
| 2.3.3 反转录 | 第48页 |
| 2.3.4 qPCR法检测基因相对表达量 | 第48-49页 |
| 2.3.5 小鼠血清的收集 | 第49页 |
| 2.3.6 组织的脱水、包埋、切片、HE染色和病理评价 | 第49-50页 |
| 2.3.7 小鼠骨髓细胞的提取 | 第50-51页 |
| 2.4 结果分析 | 第51-59页 |
| 2.4.1 LPS腹腔注射剂量与小鼠生存率的关系 | 第51-52页 |
| 2.4.2 不同浓度的FX对 LPS腹腔注射小鼠生存率的影响 | 第52-53页 |
| 2.4.3 肝脏中FX对 LPS诱导的促炎症因子mRNA释放影响 | 第53-54页 |
| 2.4.4 肝脏中FX对葡萄糖转运相关因子mRNA释放影响 | 第54-55页 |
| 2.4.5 FX对小鼠血清中促炎症因子释放影响 | 第55-57页 |
| 2.4.6 HE染色检测FX对小鼠肝脏的保护作用 | 第57-58页 |
| 2.4.7 小鼠骨髓巨噬细胞中FX对 LPS诱导的促炎症因子释放影响 | 第58-59页 |
| 2.5 结论 | 第59-62页 |
| 第三章 FX抑制IRF3 二聚体参与先天免疫调控 | 第62-85页 |
| 3.1 前言 | 第62页 |
| 3.2 实验材料 | 第62-63页 |
| 3.2.1 试剂耗材 | 第62-63页 |
| 3.2.2 主要仪器 | 第63页 |
| 3.3 实验方法 | 第63-70页 |
| 3.3.1 L929 细胞的培养、传代、冻存和复苏 | 第63-64页 |
| 3.3.2 主要试剂的配制 | 第64-65页 |
| 3.3.3 琼脂糖凝胶电泳 | 第65页 |
| 3.3.4 细胞转染 | 第65页 |
| 3.3.5 Digitonin法 c GAMP刺激 | 第65-66页 |
| 3.3.6 PFO法 c GAMP刺激 | 第66页 |
| 3.3.7 过表达载体构建 | 第66-69页 |
| 3.3.8 TBK-1 蛋白激酶活力检测 | 第69-70页 |
| 3.4 结果分析 | 第70-81页 |
| 3.4.1 L929 细胞中FX对 HT-DNA,Poly(I:C)和c GAMP诱导的细胞因子释放影响 | 第70-72页 |
| 3.4.2 FX对 HT-DNA,Poly(I:C)和c GAMP诱导的c GAS-STING通路的影响 | 第72-73页 |
| 3.4.3 巨噬细胞中FX对 HT-DNA,Poly(I:C)和c GAMP诱导的细胞因子释放影响 | 第73-74页 |
| 3.4.4 FX对 HT-DNA,Poly(I:C)和c GAMP诱导的IFN-β释放的影响 | 第74-75页 |
| 3.4.5 载体酶切 | 第75页 |
| 3.4.6 连接产物测序 | 第75-76页 |
| 3.4.7 在293T细胞中FX对过表达TBK1 诱导的细胞因子mRNA表达的影响 | 第76-77页 |
| 3.4.8 FX对293T细胞转染pEGFP-N1 的影响 | 第77-78页 |
| 3.4.9 FX对293T细胞中过表达TBK1和IRF3后c GAS-STING通路的影响 | 第78-80页 |
| 3.4.10 TBK-1 蛋白激酶活力的检测 | 第80-81页 |
| 3.4.11 FX不同浓度对293T细胞中过表达IRF3 的影响 | 第81页 |
| 3.5 结论 | 第81-85页 |
| 参考文献 | 第85-100页 |
| 攻读学位期间科研成果 | 第100-102页 |
| 致谢 | 第102-104页 |
| 个人简历 | 第104-105页 |
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