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地衣芽胞杆菌代谢组学样品制备方法的建立及环境因素对其生物合成γ-PGA的影响 |
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| 论文目录 |
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| 摘要 | 第6-7页 | | ABSTRACT | 第7-8页 | | 第一章 文献综述 | 第9-17页 | | 1.1 微生物代谢组学研究进展 | 第9-12页 | | 1.1.1 代谢组学简介 | 第9-10页 | | 1.1.2 微生物代谢组学研究 | 第10-11页 | | 1.1.3 微生物代谢组学样品制备方法 | 第11-12页 | | 1.2 聚γ-谷氨酸及其合成途径 | 第12-14页 | | 1.2.1 聚γ-谷氨酸简介 | 第12页 | | 1.2.2 γ-PGA合成途径 | 第12-14页 | | 1.3 环境因素方法在生物发酵工程中的研究现状 | 第14-16页 | | 1.4 本课题的学术意义与应用前景 | 第16-17页 | | 第二章 地衣芽胞杆菌WX-02代谢组学样品制备 | 第17-27页 | | 2.1 前言 | 第17页 | | 2.2 材料与方法 | 第17-19页 | | 2.2.1 菌株 | 第17页 | | 2.2.2 培养基 | 第17-18页 | | 2.2.3 主要仪器 | 第18页 | | 2.2.4 培养条件 | 第18页 | | 2.2.5 建立HPLC测定地衣芽胞杆菌WX-02胞内能量代谢物质方法 | 第18-19页 | | 2.2.6 淬灭方法的优化 | 第19页 | | 2.2.7 洗涤剂的优化 | 第19页 | | 2.2.8 建立细胞破碎条件 | 第19页 | | 2.3 结果与讨论 | 第19-26页 | | 2.3.1 确定HPLC方法的相关参数 | 第19-21页 | | 2.3.2 标准曲线绘制 | 第21页 | | 2.3.3 精密度试验 | 第21-22页 | | 2.3.4 回收率试验 | 第22页 | | 2.3.5 淬灭方法的优化 | 第22-25页 | | 2.3.6 洗涤剂优化 | 第25页 | | 2.3.7 压力破碎条件优化 | 第25-26页 | | 2.4 结论 | 第26-27页 | | 第三章 环境因素对地衣芽胞杆菌生物合成γ-PGA的影响 | 第27-41页 | | 3.1 前言 | 第27页 | | 3.2 材料与方法 | 第27-30页 | | 3.2.1 菌株 | 第27页 | | 3.2.2 培养基 | 第27-28页 | | 3.2.3 主要仪器 | 第28页 | | 3.2.4 培养条件 | 第28页 | | 3.2.5 乙醇处理 | 第28页 | | 3.2.6 冷冲击 | 第28页 | | 3.2.7 H_2O_2处理 | 第28-29页 | | 3.2.8 乙酸钠处理 | 第29页 | | 3.2.9 超声波冲击 | 第29页 | | 3.2.10 生物量的检测 | 第29页 | | 3.2.11 葡萄糖含量测定 | 第29页 | | 3.2.12 丙酮酸含量测定 | 第29页 | | 3.2.13 γ-PGA的分离纯化 | 第29-30页 | | 3.2.14 γ-PGA浓度检测 | 第30页 | | 3.2.15 γ-PGA分子量的检测 | 第30页 | | 3.3 结果与讨论 | 第30-40页 | | 3.3.1 乙醇对地衣芽胞杆菌WX-02生物合成γ-PGA的影响 | 第30-31页 | | 3.3.2 冷冲击对地衣芽胞杆菌WX-02生物合成γ-PGA的影响 | 第31-33页 | | 3.3.3 H_2O_2对地衣芽胞杆菌WX-02生物合成γ-PGA的影响 | 第33页 | | 3.3.4 乙酸钠对γ-PGA发酵的影响 | 第33-36页 | | 3.3.5 超声波对γ-PGA发酵的影响 | 第36-40页 | | 3.4 结论 | 第40-41页 | | 第四章 结论与展望 | 第41-43页 | | 4.1 结论 | 第41页 | | 4.2 展望 | 第41-43页 | | 参考文献 | 第43-49页 | | 致谢 | 第49-50页 | | 在读期间发表及待发表的论文 | 第50页 |
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